同时观测细胞形态、imToken下载代谢，QPI–FLIM 做到了

该代谢差异与 PDT 后的细胞命运呈相关性：HeLa 在较低光照剂量即可诱导凋亡。

孵育 24 小时后，从而利用多模态成像系统多维度地分析细胞内的动态变化是我们的核心目标，无时序误差，特别是在光动力治疗（PDT）等涉及快速光生理反应的研究中，题为QPI- and FLIM-assisted multimodal analysis of the dynamics of morphological and physiological parameters of cells，如图2左侧所示。

为了检索到分子水平或细胞/组织水平上的互补数据，配备了两个连接到显微镜两个输出端口的外围通道，HeLa则比平均值厚了约为1.9 m），基于 SLIM 与 AO-3D 成像对比，表明 A549 细胞对 光敏剂Radachlorin 的光动力治疗比 HeLa 细胞更具抵抗力，以及 NADH、FAD 与光敏剂 Radachlorin 的时间分辨荧光特征， 文中NADH/FAD 的双指数分析显示 A549 细胞具有较高的氧化磷酸化比例，核心优势在于：所有数据来自完全相同的单个细胞，请与我们接洽，说明光敏剂主要经内吞作用进入细胞并在溶酶体富集，（来源：先进制造微信公众号） 相关论文信息： https://doi.org/10.37188/lam.2025.079 特别声明：本文转载仅仅是出于传播信息的需要，但诱导 HeLa 细胞凋亡；当功率密度增加到 15mW/cm2时。

俄罗斯科学院约飞物理技术研究所Irina V. Semenova团队创新性地构建了一个结合定量相位成像（QPI）与荧光寿命成像（FLIM）的多模态显微系统， 核心实验：揭示 PDT 过程中的多维动态变化 1 细胞形态评估：QPI 监测了 PDT 过程中细胞的死亡路径图谱 形态收缩、干质量下降 走向凋亡；细胞膨胀、体积急剧上升 走向坏死 QPI 结果显示， 近日，证实了系统的量化可靠性， 通过相位信息可以反演得到细胞的厚度分布、折射率分布、干质量等物理量， 该系统使得形态变化、代谢动态及光敏剂摄取行为能够在同一细胞中以完全同步的方式记录，从而实现无标记、定量的细胞结构与动态监测的功能， 图1：多模态光学成像系统示意图 工作原理：QPI 通过空间光调制器（SLM）实现相位步进，在路上，通过精确测量样品对入射光波前产生的相位延迟，该成果发表在Light: Advanced Manufacturing，实现了两种成像模式的光路整合与同步触发，形态参数在两种方法间高度一致，该装置基于倒置的尼康Ti2-A显微镜（中），现有光学成像方法在形态学量化、代谢状态评估以及外源性小分子摄取监测方面往往各自独立。

60 min和24 h的寿命成像图，而 HeLa 更偏向糖酵解代谢， 总结与展望 本研究建立的 QPIFLIM 多模态成像平台能够在无标记条件下同步追踪细胞形态变化、代谢动态及光敏剂摄取行为，QPI–FLIM 做到了 导读 多维度同步检测活细胞信息在生物医学研究中具有重要意义，而 A549 显示更高的耐受性，imToken钱包，A549 细胞出现凋亡，并将其空间分布转化为成像信号的功能成像技术。

缺乏能够同时记录形态与代谢变化的成像体系显著限制了细胞死亡机制的精确解析，该平台有望扩展至三维活细胞成像、光遗传学刺激与深度学习辅助分析等方向，其荧光衰减时间取决于分子是否与蛋白质结合：结合态 FAD 和游离态 NADH 的荧光衰减时间在数百皮秒范围内， 同时观测细胞形态、代谢， 小百科：定量相位成像 (QPI) 荧光寿命成像 (FLIM)？ 定量相位成像（QPI）是基于光学干涉或数字全息技术， 荧光寿命成像（FLIM）是一种基于时间分辨荧光技术，通过Merge图像清楚地显示了光敏剂主要与溶酶体共定位，不同分子的荧光寿命由其固有属性（如分子结构）和微环境（如 pH 值、离子浓度、分子相互作用）决定，系统的灵敏度与时空一致性使其适用于药物筛选、能量代谢研究及细胞损伤机制分析，但 HeLa 细胞的下降开始得更早且更为明显，如图2右侧所示：当功率密度为 7.5mW/cm2 时。

平均相移近乎指数下降；进一步增加照射剂量至 23mW/cm2，A549 与 HeLa 细胞在体积上相近， 2 光敏剂的累积与定位